一、模型構(gòu)建通用原則

1. 病原體選擇：
• 臨床分離株（貼近人類感染）或?qū)嶒炇覙藴手辏ㄈ绱竽c桿菌ATCC 25922）。
2. 動物選擇：
• 小鼠（常用）、大鼠、倉鼠、豚鼠或非人靈長類（如HIV研究需人源化小鼠）。
• 免疫缺陷鼠（如SCID、NSG）用于研究宿主免疫機制。
3. 感染途徑：
• 模擬自然感染途徑（如呼吸道、消化道、血液等）。

二、常見感染模型構(gòu)建方法

1. 細菌感染模型

示例：肺炎克雷伯菌（Klebsiella pneumoniae）肺部感染

• 步驟：
1. 培養(yǎng)細菌至對數(shù)生長期（OD600≈0.6），離心后重懸于PBS。
2. 麻醉小鼠，氣管內(nèi)滴注50 μL菌液（1×10^6 CFU，劑量需預(yù)實驗確定）。
3. 監(jiān)測體重、存活率，24-72小時后取肺組織進行CFU計數(shù)和病理分析。
• 關(guān)鍵指標：

• 肺組織細菌載量（CFU/g）、炎癥因子（IL-1β、TNF-α）、肺水腫（濕/干重比）。

2. 病毒感染模型

示例：流感病毒（H1N1）呼吸道感染

• 步驟：
1. 病毒擴增（MDCK細胞），測定TCID50。
2. 麻醉小鼠，鼻內(nèi)接種50 μL病毒液（1×10^3 TCID50）。
3. 每日監(jiān)測體重，3-7天后取肺組織檢測病毒載量（qPCR）和病理變化。
• 注意事項：

• 需在BSL-2及以上實驗室操作。
• 使用免疫缺陷鼠時需降低病毒劑量（如1×10^2 TCID50）。

3. 真菌感染模型

示例：白色念珠菌（Candida albicans）系統(tǒng)性感染

• 步驟：
1. 培養(yǎng)真菌至對數(shù)期，PBS洗滌后調(diào)整濃度（1×10^6 CFU/mL）。
2. 尾靜脈注射100 μL菌液（1×10^5 CFU/小鼠）。
3. 觀察生存曲線，取腎臟、脾臟進行CFU計數(shù)和組織病理學（PAS染色）。
• 關(guān)鍵點：

• 免疫抑制小鼠（如環(huán)lin酰胺預(yù)處理）可增強感染表型。

4. 寄生蟲感染模型

示例：瘧原蟲（Plasmodium berghei）血液感染

• 步驟：
1. 從感染小鼠采血（含蟲紅細胞），稀釋至1×10^6寄生紅細胞/mL。
2. 腹腔或尾靜脈注射100 μL（1×10^5寄生紅細胞）。
3. 每日采血涂片（吉姆薩染色），計算寄生蟲血癥（感染紅細胞百分比）。

三、感染途徑選擇

四、表型驗證方法

1. 病原體載量：
• 細菌/真菌：組織勻漿后CFU計數(shù)。
• 病毒：qPCR檢測病毒核酸或空斑試驗。
• 寄生蟲：顯微鏡計數(shù)或熒光報告基因檢測。
2. 宿主反應(yīng)：
• 組織病理學（HE染色、免疫組化）。
• 炎癥因子（ELISA或流式細胞術(shù)）。
• 免疫細胞浸潤（流式檢測巨噬細胞、中性粒細胞等）。

五、注意事項

1. 生物安全：
• 根據(jù)病原體危險等級（BSL-1至BSL-4）選擇對應(yīng)防護措施。
2. 劑量優(yōu)化：
• 預(yù)實驗確定LD50或ID50，避免動物快速死亡或無表型。
3. 對照設(shè)置：
• 空白對照（PBS）、滅活病原體對照、免疫抑制對照（如適用）。
4. 倫理終點：
• 設(shè)定人道終點（如體重下降≥20%需安樂si）。